VPD Chart

Anbau-Ratgeber

Crop Steering

Aktualisiert am

Was ist Crop Steering?

Crop Steering ist die Steuerung des Pflanzenwachstums über Bewässerung und Klima. Jede Einstellung gibt der Pflanze ein Signal. Manche Signale lassen die Pflanze mehr Wurzeln, Stängel und Blätter bilden: Das ist vegetatives Wachstum. Andere Signale lassen die Pflanze mehr Blüten und Früchte bilden: Das ist generatives Wachstum.

Die Methode stammt aus dem Gewächshausanbau von Tomaten, Gurken und Paprika auf Steinwolle. Auch viele Cannabis-Grower nutzen sie, mit Sensoren, die den Wassergehalt und die EC des Substrats messen.

Crop Steering ist kein Rezept. Wählen Sie eine Richtung und nehmen Sie eine kleine Änderung vor. Prüfen Sie dann die Pflanzen und passen Sie die Einstellungen erneut an.

Vegetativ oder generativ?

Blätter nutzen Licht, um Zucker zu bilden. Die Pflanze leitet den Zucker zu den Teilen, die wachsen: Wurzeln, Stängel, neue Blätter, Blüten und Früchte. Blüten und Früchte erhalten einen großen Teil des Zuckers. In einem Tomatenbestand erhalten die Früchte ungefähr zwei Drittel.

Vegetatives Wachstum gibt der Pflanze ihre Wurzeln, Stängel und Blätter. Eine junge Pflanze muss diese zuerst bilden, weil die Blätter den Zucker herstellen. Generatives Wachstum bringt die Ernte. In der Blüte leitet die Pflanze den größten Teil ihres Zuckers zu den Blüten und Früchten.

Crop Steering hält die beiden Wachstumsarten im Gleichgewicht. Die Pflanze braucht genug Blätter, um Zucker zu bilden, und genug Blüten oder Früchte, um ihn zu verbrauchen.

Eine zu vegetative Pflanze bildet große Blätter und lange Stängel, aber wenige Blüten. Ihre Ernte kommt spät. Eine zu generative Pflanze bleibt klein. Sie kann nicht genug Zucker für ihre Blüten und Früchte bilden.

Bei Blattgemüse ist das Blatt die Ernte. Halten Sie diese Kulturen vegetativ.

Wie liest man die Pflanze?

Die Pflanze zeigt ihr Gleichgewicht. Prüfen Sie jede Woche dieselben Pflanzen zur selben Tageszeit. Notieren Sie, was Sie sehen. Ein Trend über zwei oder drei Wochen sagt mehr als eine einzelne Messung.

Vegetative Anzeichen

Cannabis

  • Lange Internodien und starkes Strecken
  • Große, weiche Blätter
  • Neue weiße Blütenstempel spät in der Blüte

Tomate

  • Ein dicker Stängel an der Spitze: meist mehr als 12 mm
  • Offene Blüten weit von der Spitze entfernt: mehr als 13 cm
  • Eingerollte, dicke, dunkelgrüne Blätter
  • Lange, dünne Rispenstiele, die nach oben zeigen, blasse Blüten

Generative Anzeichen

Cannabis

  • Sehr kurze Internodien
  • Dunkle Blätter, manchmal mit verbrannten Spitzen
  • Langsames Wachstum: Das Blätterdach füllt das Netz nicht aus

Tomate

  • Ein dünner Stängel an der Spitze: meist weniger als 8 mm
  • Offene Blüten nahe der Spitze: innerhalb von 5–8 cm
  • Flache, offene, hellgrüne Blätter
  • Kurze, gebogene Rispenstiele, dunkelgelbe Blüten, die sich schnell öffnen

Messen Sie den Tomatenstängel 10–15 cm unterhalb der Spitze. Fleischtomaten haben dickere Stängel als Kirschtomaten. Die Anzeichen bei Cannabis stammen aus der Praxis der Grower, nicht aus Versuchen.

Steuern Sie eine schwache Pflanze nicht generativ. Bei zu wenig Licht oder zu vielen Früchten wird eine Pflanze dünn, und sie kann generativ aussehen. Eine generative Steuerung schwächt sie weiter. Finden Sie zuerst die Ursache.

Mit welchen Werkzeugen steuert man die Kultur?

Sie steuern über die Wurzelzone und über das Klima. Die Tabelle zeigt die Richtung jedes Werkzeugs. Auf Steinwolle und Kokos ist die Bewässerung das wichtigste Werkzeug.

Die Richtung jedes Steuerungswerkzeugs
EinstellungVegetativGenerativ
Erste Bewässerung des TagesFrüherSpäter
Letzte Bewässerung des TagesSpäterFrüher
ShotgrößeKleinerGrößer
DrybackKleinerGrößer
RunoffMehrWeniger
Substrat-ECNiedrigerHöher
VPDNiedrigerHöher

Die Temperatur steht nicht in der Tabelle, weil die Quellen sich nicht einig sind. Siehe Wie steuert man mit VPD und Temperatur?

Licht und CO₂ bestimmen, wie viel Zucker die Pflanze bilden kann. Mit mehr Licht kann die Pflanze mehr Blüten und Früchte versorgen. In einem Cannabis-Versuch brachte mehr Licht mehr Ertrag, und die Blüten erhielten einen größeren Anteil der Pflanzenmasse.

Tomatenanbauer steuern auch von Hand. Mehr Früchte an jeder Rispe machen die Pflanze generativer. Mehr Blätter machen sie vegetativer.

Wie steuert man mit der Bewässerung?

Auf Steinwolle und Kokos bestimmen Sie, wann die Bewässerung beginnt und endet, wie groß jeder Shot ist und wie stark das Substrat abtrocknet.

VWC
Volumetrischer Wassergehalt (engl. volumetric water content): der Anteil des Substratvolumens, der aus Wasser besteht, in Prozent. Ein VWC-Punkt ist 1% des Substratvolumens.
Shot
Eine kurze Bewässerung (eine einzelne Gießgabe).
Runoff
Das Wasser, das aus dem Topf oder der Matte abläuft. Gewächshausgärtner nennen es Drain.
Dryback
Die Abtrocknung: die Abnahme des VWC zwischen zwei Shots, in VWC-Punkten. Der nächtliche Dryback beginnt mit dem letzten Shot des Tages und endet mit dem ersten Shot des nächsten Tages.
Substrat-EC
Die elektrische Leitfähigkeit des Wassers im Substrat. Sie zeigt die Menge der Nährsalze an den Wurzeln.

Grower teilen den Tag in Bewässerungsphasen ein. Die Phasen P1, P2 und P3 stammen aus dem Anbau auf Steinwolle. Cannabis-Grower haben P0 hinzugefügt.

P0
Von Licht an bis zum ersten Shot. Die Pflanze beginnt zu transpirieren, und das Substrat trocknet weiter ab.
P1
Die ersten Shots des Tages. Sie erhöhen den VWC bis zum Höchstwert oder bis zum ersten Runoff.
P2
Shots, die den VWC nahe am Höchstwert halten.
P3
Vom letzten Shot bis Licht an. Das Substrat trocknet während der restlichen Lichtphase und während der Nacht ab.

Vegetativ

P0P1P2P3DrybackLicht anLicht ausLicht an

Früher Beginn, spätes Ende: ein kleiner Dryback.

Generativ

P0P1P2P3DrybackLicht anLicht ausLicht an

Später Beginn, frühes Ende: ein großer Dryback.

Der VWC während eines Tages mit 12 Stunden Licht. Die Nacht ist im halben Maßstab dargestellt.

Um vegetativ zu steuern, beginnen Sie die Bewässerung früh und beenden Sie sie spät. P0 und P3 sind kurz, und der Dryback ist klein. Um generativ zu steuern, beginnen Sie die Bewässerung spät und beenden Sie sie früh. P0 und P3 sind lang, und der Dryback ist groß.

Ausgangswerte für Cannabis auf Steinwolle oder Kokos
EinstellungVegetativGenerativ
Erster Shot nach Licht an0–1 h2–4 h
Letzter Shot vor Licht aus0–2 h3–4 h
Shotgröße, % des Substratvolumens1–3%4–6%
Nächtlicher Dryback, VWC-Punkte5–1015–30

Herstellerwerte für Cannabis auf Steinwolle oder Kokos: Grodan für die Zeiten und die Shotgröße, AROYA für den Dryback. Es sind Ausgangswerte, keine Versuchsergebnisse.

Manche Hersteller geben den Dryback als Prozentsatz des höchsten VWC an. Athena nennt 30–40% für eine vegetative Steuerung und 40–50% für eine generative Steuerung. Ein Dryback von 40% bei einem Höchstwert von 60% VWC entspricht 24 VWC-Punkten.

Shots mit Runoff spülen Salze aus dem Substrat. Die Substrat-EC sinkt dann bis nahe an die EC der Nährlösung. Shots ohne Runoff lassen die Salze im Substrat, und die Substrat-EC steigt. Grower nennen das EC-Stacking. Es ist ein generatives Werkzeug.

Wenn das Substrat abtrocknet, bleiben die Salze darin. Deshalb ist die Substrat-EC am Ende des Drybacks am höchsten, und sie sinkt während P1. Vergleichen Sie die Substrat-EC jeden Tag zur selben Zeit.

Die Blöcke sind nicht alle gleich. Setzen Sie Sensoren in mehr als einen Block. Verwenden Sie dann den Mittelwert der Sensoren.

Athena nennt eine Substrat-EC von 3–5 mS/cm in der Veg-Phase und 4–10 mS/cm in der Streckphase. Verwenden Sie keine sehr hohe EC, um die Pflanzen kürzer zu halten. In einem Versuch machte eine Nährlösung mit einer EC von 8 mS/cm statt 4 die Cannabispflanzen 15% kürzer. Aber der Blütenertrag sank um bis zu 20% (Allred et al. 2025).

Lassen Sie Steinwollblöcke nicht unter 25–30% VWC abtrocknen. Das Wurzelwachstum nimmt ab, und trockene Bereiche lassen sich nur schwer wieder befeuchten.

Ohne Substratsensor verwenden Sie eine Waage:

  1. Bewässern Sie einen typischen Topf, bis Runoff austritt. Warten Sie, bis der Runoff aufhört.
  2. Wiegen Sie den Topf. Das ist das Gewicht beim höchsten VWC.
  3. Wiegen Sie den Topf vor dem ersten Shot des nächsten Tages erneut.
  4. Teilen Sie die Gewichtsabnahme in Gramm durch das Substratvolumen in mL. Multiplizieren Sie das Ergebnis mit 100.

Das Ergebnis ist der Dryback in VWC-Punkten. Ein Topf mit 4 L Substrat, der 600 g leichter wird, hat zum Beispiel einen Dryback von 15 Punkten.

Um den Runoff zu messen, stellen Sie zwei oder drei typische Pflanzen auf Untersetzer. Messen Sie mittags die Runoff-Menge und die Runoff-EC. Der erste Runoff nach der Nacht hat eine höhere EC.

In Living Soil haben Sie weniger Kontrolle. Die Erde speichert Nährstoffe und gibt sie langsam ab. Deshalb zeigt die Runoff-EC nicht die EC an den Wurzeln. Steuern Sie über die Bewässerungszeiten, den Dryback und das Klima. EC-Stacking ist ein Werkzeug für Steinwolle und Kokos.

Wie steuert man mit VPD und Temperatur?

Der VPD steuert die Transpiration. Bei niedrigem VPD bleiben die Zellen voll Wasser, und die Blätter dehnen sich aus. Die Pflanze bildet große, weiche Blätter und lange Stängel. Bei hohem VPD steigt die Transpiration, und die Pflanze bleibt kompakter.

Verwenden Sie die Zone des Diagramms für die Wachstumsphase. Um vegetativ zu steuern, halten Sie den VPD in der unteren Hälfte der Zone. Um generativ zu steuern, halten Sie ihn in der oberen Hälfte. Bleiben Sie in der Zone.

Um die rF und die Temperatur für einen VPD zu finden, legen Sie im Diagramm ein Ziel fest. Am Computer klicken Sie mit der rechten Maustaste auf eine Zelle und wählen „Ziel festlegen“. Auf dem Smartphone halten Sie die Zelle gedrückt. Wählen Sie dann „Zeigen Sie mir, wie“.

Ziel im VPD-Diagramm festlegen

Ein höherer VPD ergibt auch einen größeren Dryback, weil die Pflanze mehr Wasser verbraucht. Ein höherer VPD und ein späterer erster Shot geben der Pflanze also zweimal dasselbe Signal. Wenn Sie den VPD ändern, messen Sie den Dryback erneut. Passen Sie dann die Bewässerung an.

Die Zonen des Diagramms verwenden den Blatt-VPD. Viele Crop-Steering-Ratgeber geben den Luft-VPD an, mit dem Blatt auf Lufttemperatur. Ein Blatt, das 2 °C (3.6 °F) kühler ist als die Luft, hat einen um ungefähr 0.3–0.4 kPa niedrigeren VPD.

Verwenden Sie keinen sehr hohen VPD, um generativ zu steuern. Wenn der VPD zu hoch ist, schließen sich die Spaltöffnungen, und die Pflanze bildet weniger Zucker.

Bei Licht aus kühlt die Luft ab, und die rF steigt. Wenn die Luft zum Beispiel bei gleichem Wasserdampfgehalt von 24 °C (75 °F) auf 18 °C (64 °F) abkühlt, steigt die rF von 53% auf 77%. Achten Sie darauf, dass Blätter und Blüten wärmer bleiben als der Taupunkt.

Halten Sie die rF in der späten Blüte niedrig. Bewegen Sie Luft durch das Blätterdach. Botrytis (Knospenfäule) kann die Blüten schnell zerstören, wenn die rF bei 17–24 °C (63–75 °F) über 70% liegt (Mahmoud et al. 2023). Das Innere einer dichten Blüte ist feuchter als der Raum. In einem Versuch verringerte mehr Luftbewegung um die Blüten die Knospenfäule um 66–92% (Buirs et al. 2025).

Temperatur. Bei Tomaten entwickeln sich die Rispen bei einer höheren 24-Stunden-Durchschnittstemperatur schneller. Mehr Früchte verbrauchen dann mehr Zucker, und die Pflanze wird generativer. Ist die Temperatur für das Licht zu hoch, wird die Pflanze lang und dünn.

Viele Cannabis-Ratgeber verwenden die umgekehrte Regel: einen wärmeren Raum für eine vegetative Steuerung und einen kühleren Raum für eine generative Steuerung. Wir haben keinen Versuch gefunden, der die beiden Regeln vergleicht.

Der DIF ist die Tagestemperatur minus die Nachttemperatur. In der Forschung macht ein größerer positiver DIF die Internodien länger. Ein DIF von null hält die Pflanzen kompakter. Ein Temperaturabfall von 3–8 °C (5–15 °F) für 2–3 Stunden, ab 30 Minuten vor Licht an, hat eine ähnliche Wirkung.

Viele Crop-Steering-Ratgeber nennen einen großen DIF generativ. Im Gemüsebau bedeutet das schnellere Blüte und Reife, nicht kürzere Pflanzen. Im einzigen Cannabis-Versuch, den wir gefunden haben, bildete Hanf mit kühlem Tag und warmer Nacht viel weniger Blütenmasse. Gleiche Tag- und Nachttemperaturen ergaben die meiste Blütenmasse (Bok et al. 2023).

Testen Sie eine DIF-Änderung zuerst an wenigen Pflanzen. Eine kühlere Nacht erhöht auch die rF.

Wann steuert man in welche Richtung?

Die Richtung ändert sich mit der Wachstumsphase. Bei Cannabis beginnt Blütewoche 1, wenn Sie die Lichtphase auf 12 Stunden umstellen. Die Punkte im Diagramm verwenden die Pflanze „Cannabis“ und ein Blatt, das 2 °C (3.6 °F) kühler ist als die Luft.

  1. Anzucht und frühe Veg-Phase

    Vegetativ

    Wurzeln und Blätter kommen zuerst. Bewässern Sie nach dem Umsetzen erst wieder, wenn der Block 20–30% leichter ist als im vollständig nassen Zustand (Grodan). Das hilft den Wurzeln, in den Block zu wachsen. Halten Sie den VPD in der Zone „Frühe Veg-Phase / Anzucht“.

    Im Diagramm: 0.60 kPa · 26 °C (79 °F) · 71% rF

  2. Späte Veg-Phase

    Vegetativ

    Ziehen Sie ein geschlossenes Blätterdach heran. Halten Sie den VPD in der unteren Hälfte der Zone „Späte Veg-Phase / frühe Blüte“.

    Im Diagramm: 0.90 kPa · 26 °C (79 °F) · 62% rF

  3. Die ersten 3–4 Wochen der Blüte: die Streckphase

    Generativ

    Die Pflanzen strecken sich und bilden ihre Blütenansätze. Eine generative Steuerung begrenzt das Strecken: ein späterer erster Shot, ein früherer letzter Shot und ein größerer Dryback. Halten Sie den VPD in der oberen Hälfte der Zone „Späte Veg-Phase / frühe Blüte“.

    Im Diagramm: 1.10 kPa · 26 °C (79 °F) · 56% rF

  4. Mittlere Blüte: der Masseaufbau

    Vegetativ

    Wenn die Streckphase endet, legen die Blüten an Masse zu. Eine vegetative Steuerung gibt ihnen Wasser: mehr P2-Shots, ein kleinerer Dryback und mehr Runoff. Halten Sie den VPD in der unteren Hälfte der Zone „Mittlere / späte Blüte“.

    Im Diagramm: 1.30 kPa · 26 °C (79 °F) · 50% rF

  5. Die letzten 1–2 Wochen: die Reife

    Generativ

    Die Quellen sind sich nicht einig. Viele Grower verwenden einen größeren Dryback und einen VPD in der oberen Hälfte der Zone „Mittlere / späte Blüte“. Eine niedrigere rF verringert auch das Risiko von Knospenfäule. Wenn Sie die EC senken, senken Sie sie schrittweise. In einem Versuch verringerte ein längeres Spülen (eine niedrige EC vor der Ernte) die Blütenmasse und den CBD-Ertrag (Alden & Faust 2025).

    Im Diagramm: 1.45 kPa · 25 °C (77 °F) · 43% rF

Bei Tomaten, Gurken und Paprika halten Sie das Gleichgewicht die ganze Saison über:

  • Messen Sie jede Woche den Stängel an der Spitze und den Abstand von der Spitze bis zu den offenen Blüten. Steuern Sie so, dass beide Werte im normalen Bereich der Sorte bleiben.
  • Bei vielen Früchten an der Pflanze steuern Sie vegetativer. Das hält die Spitze der Pflanze kräftig.
  • Grodan steuert die Wurzelzone an hellen Tagen vegetativer und an dunklen Tagen generativer.

Blattgemüse: Das Blatt ist die Ernte. Halten Sie die Kultur den ganzen Zyklus über vegetativ.

Wie steuert man sicher?

Crop Steering arbeitet mit mildem Stress. Zu viel Stress verringert den Ertrag. Befolgen Sie diese Regeln:

  1. Ändern Sie immer nur ein Werkzeug.
  2. Nehmen Sie kleine Änderungen vor. Bleiben Sie in der Zone des Diagramms für die Wachstumsphase.
  3. Warten Sie einige Tage. Prüfen Sie dann die Pflanzen vor der nächsten Änderung.
  4. Notieren Sie die Einstellungen und die Anzeichen der Pflanzen.
  5. Testen Sie eine neue Strategie zuerst an wenigen Pflanzen.
  • Lassen Sie Steinwollblöcke nicht unter 25–30% VWC abtrocknen. Das Wurzelwachstum nimmt ab.
  • Vorsicht bei einem großen Dryback und einer hohen EC zur selben Zeit. Beides addiert sich, und die Wurzeln können schwerer Wasser aufnehmen.
  • Lassen Sie beim EC-Stacking nicht mehr als 3 Tage ohne Runoff vergehen. Der Runoff entfernt die Salze, die sich im Substrat ansammeln.
  • Wenn Ihr Wasser viel Natrium enthält, verzichten Sie auf EC-Stacking. Beim EC-Stacking sammelt sich auch das Natrium an. Mehr als 5 mmol/L Natriumchlorid kann den Ertrag und den Wirkstoffgehalt von Cannabis verringern (Yep et al. 2020).
  • Achten Sie bei Licht aus darauf, dass Blätter und Blüten wärmer bleiben als der Taupunkt. Wasser auf den Pflanzen begünstigt Krankheiten.

Was zeigt die Forschung?

Die meisten Richtwerte für das Crop Steering stammen von Herstellern und Growern, nicht aus Versuchen. Die Versuche zeigen Folgendes:

  • Stress kann eine Pflanze kürzer machen, kostet aber Ertrag. Bei Cannabis machte eine Nährlösung mit einer EC von 8 mS/cm statt 4 die Pflanzen 15% kürzer. Der Blütenertrag sank um bis zu 20%, und der Cannabinoidgehalt änderte sich nicht (Allred et al. 2025).
  • Eine höhere EC brachte weder mehr Ertrag noch mehr Qualität. Bei Cannabis ergab eine Nährlösung mit einer EC von 4 mS/cm statt 2 keine signifikante Steigerung (Hershkowitz et al. 2025).
  • Ein längeres Spülen vor der Ernte verringerte die Blütenmasse und den CBD-Ertrag (Alden & Faust 2025).
  • Bei Tomaten verringerte jede Erhöhung der EC um 1 mS/cm über 2 mS/cm hinaus den marktfähigen Ertrag um 5.1%. Die Zahl der Früchte änderte sich nicht, aber die Früchte waren kleiner (Li et al. 2001).
  • Mäßige Trockenheit sparte Wasser ohne Ertragsverlust. Starke Trockenheit verringerte den Ertrag und brachte keinen Vorteil (Morgan et al. 2024, Crispim Massuela et al. 2026).
  • Ein Versuch fand mehr Cannabinoide nach kontrollierter Trockenheit in Blütewoche 7 (Caplan et al. 2019). Spätere Versuche fanden diese Steigerung nicht (Morgan et al. 2024, Pena et al. 2025, Crispim Massuela et al. 2026).
  • Bei Cannabis stieg der Ertrag linear mit dem Licht, bis 1800 µmol/m²/s. Der Wirkstoffgehalt änderte sich nicht (Rodriguez-Morrison et al. 2021).
  • Zwischen 0.2 und 1.0 kPa hat die Luftfeuchtigkeit wenig Einfluss auf die meisten gärtnerischen Kulturen (Grange & Hand 1987). Bei Cannabis mit 78–98% rF begann die Blüte 3 Wochen später, und die Blütenmasse sank um 71% (Corredor-Perilla et al. 2025).
  • Ein größerer positiver DIF macht die Internodien länger (Erwin & Heins 1995, Myster & Moe 1995).
  • Blüten und Früchte steuern den größten Teil der Zuckerverteilung. Licht hat eine indirekte Wirkung: Es verändert die Zahl der Blüten und Früchte (Marcelis 1996).

Nutzen Sie Crop Steering, um die Form und den zeitlichen Ablauf der Kultur zu steuern. Erwarten Sie nicht, dass Stress den Ertrag erhöht.

Quellen

Alden, M.J., Faust, J.E. (2025). Exploring the legacy practice of flushing in controlled-environment production of high-CBD cannabis (Cannabis sativa). HortScience 60(10), 1818–1825. https://doi.org/10.21273/HORTSCI18752-25

Allred, J., Fatzinger, B., Bugbee, B. (2025). Crop steering through osmotic stress can reduce height but reduced yield in medical Cannabis. Journal of Cannabis Research 7, 92. https://doi.org/10.1186/s42238-025-00351-2

AROYA. Mastering dry backs: the key to optimizing yields and plant quality. Education guide. https://aroya.io/en/knowledge-base/education-guides/drybacks-101

AROYA. Frequently asked questions: crop steering. Knowledge base. https://aroya.io/en/knowledge-base/topics/frequently-asked-questions

Athena Ag. Precision Irrigation Strategy. Support article. https://support.athenaag.com/hc/en-us/articles/25975395644315-Precision-Irrigation-Strategy

Bok, G., Hahm, S., Shin, J., Park, J. (2023). Optimizing indoor hemp cultivation efficiency through differential day–night temperature treatment. Agronomy 13(10), 2636. https://doi.org/10.3390/agronomy13102636

Buirs, L., Lung, S., Punja, Z.K. (2025). The epidemiology and management of Botrytis cinerea causing bud rot on greenhouse cultivated cannabis (Cannabis sativa L.). Canadian Journal of Plant Pathology 47(5), 443–463. https://doi.org/10.1080/07060661.2025.2478250

Caplan, D., Dixon, M., Zheng, Y. (2019). Increasing inflorescence dry weight and cannabinoid content in medical cannabis using controlled drought stress. HortScience 54(5), 964–969. https://doi.org/10.21273/HORTSCI13510-18

Corredor-Perilla, I.C., Kwon, T.-H., Park, S.-H. (2025). Elevated relative humidity significantly decreases cannabinoid concentrations while delaying flowering development in Cannabis sativa L. Frontiers in Plant Science 16, 1678142. https://doi.org/10.3389/fpls.2025.1678142

Crispim Massuela, D., Munz, S., Hartung, J., Pieters, A., Asch, F., Graeff-Hönninger, S. (2026). Less water, same buds: moderate drought as a water-saving strategy for indoor cannabis. Frontiers in Plant Science 17, 1930650. https://doi.org/10.3389/fpls.2026.1930650

Erwin, J.E., Heins, R.D. (1995). Thermomorphogenic responses in stem and leaf development. HortScience 30(5), 940–949. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.30.5.940

Grange, R.I., Hand, D.W. (1987). A review of the effects of atmospheric humidity on the growth of horticultural crops. Journal of Horticultural Science 62(2), 125–134. https://doi.org/10.1080/14620316.1987.11515760

Grodan (2024). Grow Guide, Cannabis Edition, volume 2. Chapter 3: Introduction to Crop Steering. Grodan. https://www.grodan101.com/siteassets/downloads/grow-guide/introduction-to-crop-steering.pdf

Grodan (2024). Grow Guide, Cannabis Edition, volume 2. Chapter 4: Precision Irrigation. Grodan. https://www.grodan101.com/siteassets/downloads/grow-guide/chapter-4---precision-irrigation.pdf

Grodan (2024). Grow Guide, Cannabis Edition, volume 2. Chapter 6: Growing in Grodan Products. Grodan. https://www.grodan101.com/siteassets/downloads/grow-guide/chapter-6---growing-in-grodan-products.pdf

Grodan. Tomato user advice for slab type Prestige 7.5 cm (6-phase model). Grodan. https://www.grodan.com/syssiteassets/downloads/downloads-en/brochures-grodan-en/6phase/grodan_6-phase-brochures_tomato_prestige-7.5-cm.pdf

Grubinger, V. (2017). Balancing vegetative and reproductive growth in greenhouse tomatoes. University of Vermont Extension. https://www.uvm.edu/vtvegandberry/factsheets/VegetativeReproductiveGHTomato.pdf

Hershkowitz, J.A., Westmoreland, F.M., Bugbee, B. (2025). Elevated root-zone P and nutrient concentration do not increase yield or cannabinoids in medical cannabis. Frontiers in Plant Science 16, 1433985. https://doi.org/10.3389/fpls.2025.1433985

Heuvelink, E. (1997). Effect of fruit load on dry matter partitioning in tomato. Scientia Horticulturae 69(1–2), 51–59. https://doi.org/10.1016/S0304-4238(96)00993-4

Li, Y.L., Stanghellini, C., Challa, H. (2001). Effect of electrical conductivity and transpiration on production of greenhouse tomato (Lycopersicon esculentum L.). Scientia Horticulturae 88(1), 11–29. https://doi.org/10.1016/S0304-4238(00)00190-4

Mahmoud, M., BenRejeb, I., Punja, Z.K., Buirs, L., Jabaji, S. (2023). Understanding bud rot development, caused by Botrytis cinerea, on cannabis (Cannabis sativa L.) plants grown under greenhouse conditions. Botany 101(7), 200–231. https://doi.org/10.1139/cjb-2022-0139

Marcelis, L.F.M. (1996). Sink strength as a determinant of dry matter partitioning in the whole plant. Journal of Experimental Botany 47 (Special Issue), 1281–1291. https://doi.org/10.1093/jxb/47.Special_Issue.1281

Morgan, W., Singh, J., Kesheimer, K., Davis, J., Sanz-Saez, A. (2024). Severe drought significantly reduces floral hemp (Cannabis sativa L.) yield and cannabinoid content but moderate drought does not. Environmental and Experimental Botany 219, 105649. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2024.105649

Myster, J., Moe, R. (1995). Effect of diurnal temperature alternations on plant morphology in some greenhouse crops: a mini review. Scientia Horticulturae 62(4), 205–215. https://doi.org/10.1016/0304-4238(95)00783-P

Pena, M.M., Miranda, F.R., Ribeiro, T.O., Couto, G.C.S., Rocha, S.B.F., Martins, S.C.V., DaMatta, F.M. (2025). Genotypic variation in photosynthesis and biomass partitioning underlies agronomic performance and cannabinoid profile in Cannabis sativa under drought. Plants 14(24), 3840. https://doi.org/10.3390/plants14243840

Rodriguez-Morrison, V., Llewellyn, D., Zheng, Y. (2021). Cannabis yield, potency, and leaf photosynthesis respond differently to increasing light levels in an indoor environment. Frontiers in Plant Science 12, 646020. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.646020

Runkle, E. (2009). Controlling height with temperature drops. Greenhouse Product News, April 2009. https://www.gpnmag.com/article/controlling-height-temperature-drops/

Yep, B., Gale, N.V., Zheng, Y. (2020). Aquaponic and hydroponic solutions modulate NaCl-induced stress in drug-type Cannabis sativa L. Frontiers in Plant Science 11, 1169. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.01169